Tubo Endotraquea nº3 Ø 0,43cm.l estéril

Tubos endotraqueales con balón (PVC, estériles, un solo uso)
Diámetro interno disponible (mm): 2 · 2,5 · 3 · 3,5 · 4 · 4,5 · 5 · 5,5 · 6 · 6,5 · 7 · 7,5 · 8 · 8,5 · 9 · 9,5 · 10 · 10,5 · 11 · 12 · 13

Uso profesional. Esta guía es orientativa y no sustituye las Instrucciones de Uso (IFU) ni el protocolo del centro. Si hay discrepancia, prima la etiqueta/IFU del fabricante.

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1) Descripción del producto

• Tipo: Tubo endotraqueal (TET) con balón y conector universal 15 mm.

• Material: PVC transparente grado médico; estéril por Óxido de Etileno (EO); de un solo uso.

• Extremo distal: biselado con ojo de Murphy.

• Marcajes: línea radiopaca y marcas de profundidad para documentar posición.

• Balón: perfil alto volumen–baja presión (HVLP), con balón piloto y válvula de inflado.

• Presentación: envase unitario; lote y caducidad visibles.

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2) Indicaciones (veterinaria)

• Asegurar vía aérea durante anestesia general y procedimientos que comprometan respiración/reflejos.

• Ventilación mecánica y oxigenación controlada.

• Reducción del riesgo de aspiración en animales con vómito/regurgitación o intervención abdominal.

Ámbito de especies: perros, gatos y pequeños mamíferos (hurón, conejo). Para especies grandes (p. ej., equino) se requieren tubos específicos no cubiertos por esta gama.

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3) Contraindicaciones y precauciones

• Absolutas: ninguna cuando se requiere vía aérea avanzada; si el acceso orotraqueal es imposible (trauma, obstrucción), considerar vía quirúrgica (traqueostomía).

• Relativas/precauciones: patología laríngea/traqueal, braquicéfalos, animales pediátricos y procesos inflamatorios de vía aérea ⇒ usar calibre conservador, técnica delicada y control estricto del balón.

• Alergias conocidas a materiales: revisar historia del paciente y etiqueta del producto.

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4) Selección del tamaño (por especie y peso)

Regla general: escoger el menor tamaño que permita ventilación eficaz con fuga aceptable ≈20 cmH₂O. Preparar dos tallas vecinas (±0,5–1,0 mm). Ajustar siempre a la anatomía observada con laringoscopia.

Perros

Gatos y pequeños mamíferos

Brachy vs. dolicocéfalos: en braquicéfalos, priorizar un DI menor y vigilancia adicional postextubación.

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5) Técnica de colocación (resumen operativo)

1. Preparación: preoxigenación cuando proceda; preparar 3 tallas (estimada y ±0,5–1,0 mm), laringoscopio, lubricante hidrosoluble, cinta de fijación, jeringa, manómetro de balón y succión disponible.

2. Intubación: visión directa con laringoscopia; avanzar sin forzar; no sobrepasar la carina.

3. Confirmación primaria: expansión torácica simétrica, auscultación bilateral, capnografía continua (ideal).

4. Fijación y registro: fijar a maxilar superior (o según protocolo) y anotar DI del TET y marca de profundidad en incisivos.

5. Inflado del balón: técnica de volumen mínimo oclusivo y verificación de presión (ver §7).

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6) Verificación y control de posición

• Capnografía: curva estable (ETCO₂) = confirmación traqueal.

• Auscultación: simétrica; ausencia de ruidos gástricos.

• Profundidad: comprobar marcas; si ventilación asimétrica, retirar 1–2 cm.

• Imagen (si aplica): punta ideal a mitad de tráquea torácica (evitar carina).

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7) Balón: presión objetivo y seguridad

• Perros: 20–25 cmH₂O (no exceder 30 cmH₂O).

• Gatos y pequeños mamíferos: 15–20 cmH₂O (máximo 25 cmH₂O), por mayor susceptibilidad a lesión traqueal.

• Procedimiento recomendado: inflar hasta cese de fuga alrededor de 20 cmH₂O y ajustar con manómetro para mantenerse en rango. Revalorar tras cambios de posición/tiempo.

• Riesgos de sobreinflado: isquemia de mucosa y lesión traqueal; tos/estridor postextubación.

• Medio de inflado: aire salvo indicación diferente en IFU.

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8) Mantenimiento intraoperatorio y retirada

• Fijación estable; cuello en posición neutra.

• Aspiraciones: pasadas cortas (≤10–15 s) con técnica estéril si hay secreciones.

• Monitorización: saturación, capnografía, presión de vía aérea y volúmenes.

• Extubación: desinflar completamente el balón, retirar suave; vigilar obstrucción posanestésica (sobre todo en braquicéfalos y gatos).

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9) Complicaciones frecuentes y mitigación

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10) Casos clínicos ilustrativos

1. Perro braquicéfalo 12 kg (BOAS) → DI 6,5–7,5 mm; preoxigenar; elegir DI bajo, fuga ≈20 cmH₂O; balón 20–25 cmH₂O; vigilar edema postextubación.

2. Perro 28 kg, procedimiento dental → DI 9,0–10,0 mm; fijación en comisura; capnografía continua.

3. Gato 4 kg, cistotomía → DI 4,0 mm (tener 3,5 y 4,5); balón 15–20 cmH₂O; extubación al retorno de reflejo laríngeo.

4. Conejo 2,5 kg → DI 2,5–3,0 mm; si intubación falla, usar dispositivo supraglótico; balón a mínimo.

5. Hurón 1,1 kg → DI 3,0–3,5 mm; guía maleable; confirmar con capnografía.

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11) Compatibilidad y accesorios

• Conector 15 mm universal (circuitos de anestesia/ventilación).

• Lubricante hidrosoluble.

• Estilete/guía (si el protocolo lo contempla); no sobrepasar la punta del TET con la guía.

• Posible uso con filtros HME si el servicio lo indica.

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12) Conservación, esterilidad y cumplimiento

• Almacenamiento: en su envase, seco y protegido de calor/luz; seguir límites de la etiqueta.

• Esterilidad: no usar si el envase está dañado/abierto o caducado. No reesterilizar.

• Marcado regulatorio: producto sanitario con marcado CE. Los TET de uso a corto plazo suelen ser Clase IIa; verifique en envase/IFU la clase exacta del modelo.

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13) Especificaciones resumidas (modelo estándar)

• PVC transparente, EO estéril, un solo uso.

• Bisel + ojo de Murphy; marcas de profundidad; línea radiopaca.

• Balón HVLP con piloto y válvula.

• Conector 15 mm.

• Diámetros internos (mm): 2 a 13 (ver listado al inicio).

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Recordatorio clave para el quirófano

• Fuga objetivo ≈20 cmH₂O y presión del balón

  • Perros: 20–25 cmH₂O (máx. 30).

  • Gatos/exóticos: 15–20 cmH₂O (máx. 25).

• Preparar tallas vecinas y documentar tamaño y profundidad.